Современная концепция разрушения биологических тканей
механизме повреждения тканей при криовоздействии; во-вторых, о
факторах, ограничивающих объем зоны крионекроза, и в-третьих, об
эффективном усилении криодеструкции без утраты ее основных по-
ложительных свойств. Эти вопросы, на наш взгляд, должны решаться
комплексно. Поэтому в настоящей работе представлены результаты на-
ших работ, проводимых в данном направлении с 1973 г. по настоящее
время.
Цель данной работы — представить нашу концепцию о механиз-
ме деструкции и характере регенерации тканей после криодеструкции
или комбинированного СВЧ-криогенного воздействия с учетом осо-
бенностей теплофизических свойств живой ткани и на этом основании
дать рекомендации для клинической практики.
Материалы и методы.
Для выявления структурных изменений
ткани, характеризующих механизм ее первичного повреждения, мы
провели серию морфологических исследований. Объектом исследова-
ния служила ткань печени кроликов и белых крыс, которая является
моделью гемангиомы, будучи близка к ней по теплофизическим свой-
ствам и структуре сосудистого русла. Структура сосудистого русла
печени наиболее удобна для оценки изменений, происходящих в со-
судах разных калибров и разного функционального назначения (пути
притока и оттока крови, трофическое звено). При этом большой ин-
терес представляет механизм первичного повреждения и связанные с
ним закономерности дальнейшей регенерации поврежденной ткани.
Крысам и кроликам под кеталаровым наркозом проводили лапа-
ротомию, в рану выводили долю печени. Животным 1-й группы осу-
ществляли криодеструкцию аппаратом заливного типа конструкции
РГМУ (температура наконечника – 160
◦
C, диаметр насадки — 8 мм,
время экспозиции — 1 мин). Животным 2-й группы проводили ком-
бинированное СВЧ-криогенное воздействие (предварительное облу-
чение СВЧ-полем с помощью аппарата «Яхта» контактным спосо-
бом при диаметре излучателя 25 мм и мощности 5 Вт, время экспози-
ции 1 мин; затем криодеструкция, экспозиция — 1 мин). Для изучения
острых изменений, возникающих в ткани печени, животных выво-
дили из опыта через 1,5 и 24 ч. Материал для гистологических ис-
следований фиксировали в 10%-м нейтральном растворе формалина,
заливали в парафин по общепринятой методике. Срезы окрашивали
гематоксилином и эозином по Ван-Гизону, орсеином по Браше. Для
электронно-микроскопических исследований образцы фиксировали в
2,5%-м растворе глютарового альдегида на 0,2М какодилатном буфе-
ре. Для исследования методом сканирующей электронной микроско-
пии образцы промывали в дистиллированной воде, дегидратировали в
растворах ацетона восходящих концентраций и высушивали методом
перехода через критическую точку на приборе Hithachi. Высушенные
5
